CROMATOGRAFÍA LIQUIDA DE ALTA EFICACIA (HPLC)

Q.F. Ricardo Alonso Abril Ramírez

PRIMERA SESIÓN. PRINCIPIOS TEÓRICOS:

Definición de Cromatografía, Teoría Cromatografía, Divisiones de la Cromatografía (cromatografía de fase normal, reversa, apareamiento iónico, intercambio iónico, exclusión molecular) Instrumentación (Reservorio de fase móvil, capilaridad, bombas, sistemas de gradientes, detectores, inyectores, horno), System suitability Test (Factor de Capacidad, Selectividad, Platos Teóricos, Resolución, Asimetría, conceptos y aplicaciones)

PRIMERA SESIÓN. DESENVOLVIMIENTO PRÁCTICO:

Reconocimiento de partes del equipo cromatográfico, puesta a punto del sistema cromatográfico pre análisis (Ensamblado de columnas cromatográficas, purga, filtración y degasificado de fases móviles, filtración de muestras, verificación operacional), inyección manual.

SEGUNDA SESIÓN. PRINCIPIOS TEÓRICOS:

Preparación de Fases Móviles (solventes, aditivos en fase reversa sales y reactivos de IPC, Filtración, desgasificación), Preparación de Muestras (elección de la técnica de preparación de muestras, Derivatización, etc.), Cuantificación en HPLC (integración de la señal, métodos de cuantificación: estándar externo, estándar interno, estándar agregado, normalización interna)

SEGUNDA SESIÓN. DESENVOLVIMIENTO PRÁCTICO:

Determinación de Timol y Carvacrol en aceite esencial de orégano I: Preparación de Fases Móviles, preparación de estándares, determinación de la curva de calibración, System Suitabilty Test.

TERCERA SESIÓN. PRINCIPIOS TEÓRICOS

Validación de Métodos Analíticos en HPLC (Validación Retrospectiva, Prospectiva, Transferencia de Validación, Revalidación), Parámetros de Validación (Selectividad, Sensibilidad, Linealidad, Rango, Precisión, Exactitud, Robustez, Incertidumbre), BPL en HPLC.

TERCERA SESIÓN. DESENVOLVIMIENTO PRÁCTICO:

Determinación de Timol y Carvacrol en aceite esencial de orégano II : determinación de Timol y Carvacrol en muestras obtenidas en la Región Arequipa.

Revisión y Cálculo de parámetros de Validación.

DURACION DEL CURSO TRES DIAS DE CUATRO HORAS DIARIAS (TEORIA Y PRACTICA), PARTICIPANTES 14 A 16 ALUMNOS POR MODULO, DOS MODULOS.


COSTOS


ESTUDIANTES 150 S/.
PROFESIONALES 200 S/.

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TRANSFORMACIÓN BACTERIANA

Objetivos

Dar a conocer los fundamentos y las estrategias básicas que se siguen en los procesos de manipulación de genes en los organismos procariotes.

Presentación

En la actualidad, la ingeniería genética que es el conjunto de técnicas empleadas para manipular y modificar el material genético de los seres vivos han proporcionado la clave del rápido desarrollo de la Biotecnología moderna.

Dado el enorme interés social que ha despertado hoy en día la producción de   antibióticos, vacunas, hormonas, colorantes textiles, terapia génica, etc., de una forma rápida, barata, y amigable con el ambiente, no acerca a la Ingeniería Genética como una solución.

Asimismo, se presentan los avances científicos que se han realizado en este campo en los últimos años, que permitirán comprender y evaluar la aplicación de la Ingeniería como una herramienta de la biotecnología .

Docente

María Valderrama Valencia

Dra. En Ciencias Biológicas  mención Ingeniería Genética

 Ayudantes: Berly  Cárdenas

                        Dorhina Castro G.

Contenido Teórico

• Genética, genes e información genética
• La enzimología de la Ingeniería Genética.
• Sistema de vector y hospedero.
• Procedimiento de construcción, clonación, selección y manipulación para moléculas de DNA recombinante
• Caracterización estructural de la molécula de DNA recombinante.
• Caracterización funcional de la molécula de DNA recombinante.
• Perturbación controlada de la actividad genómica.

Contenido Práctico

• Aislamiento de un gen de interés
• Aislamiento de plásmidos
• Producción de células competentes
• Transformación genética
• Selección de cepas transformadas

Horario

Teoría: 26-28, 12-14 pm

  Aula C-401

Práctica: 27, 3-7 pm

                28, 15-18 pm

                29, 12-15 pm

  H-301

Inversión

Teoría: 100  nuevos soles

Prácticas: 120 nuevos soles

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TECNICAS COMPUTACIONALES EMERGENTES EN CS. BIOLOGICAS

OBJETIVOS

• Desarrollar técnicas computaciones generadas en las Ciencias Biológicas
• Diseñar programas computacionales para resolver problemas en la Biotecnología

 SUMILLA DE CONTENIDOS:

• Algoritmos genéticos
• Autómatas celulares
• Redes Neuronales
•  Maquinas lineales

Físico M.Sc. Miguel Vizcardo Cornejo

Docente Universidad Nacional de San Agustín

Docente invitado: Universidad  Central de Venezuela, Universidad Marítima del Caribe.

Expositor en la Universidad Nacional Autónoma de México  UNAM y Universidad Autonoma de México  UAM.

VACANTES: 18

COSTO:  S/. 80.00

02 BECAS

TOTAL: 20 participantes

CALENDARIO PARA EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD

 Del 30 de mayo al 03 de junio del 2011,  de 13 a 15 hrs.

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APLICACIONES DE LA VOLTAMPEROMETRIA EN EL MONITOREO DE CONTAMINANTES

OBJETIVOS:

Actualizar y profundizar los conocimientos universitarios en el área de voltametría aplicada al monitoreo de contaminantes medioambientales.

Demostrar las ventajas de esta técnica analítica

CONTENIDOS:

Introducción a la voltametría.

Aplicaciones selectas de monitoreo medioambiental por voltametría.

Resumen y conclusiones.

RESPONSABLES:

Laboratorio de investigación de proyecto MERCURIO

Facultad de ciencias farmacéuticas bioquímicas y biotecnológicas

Jose A. Villanueva Salas, Ph.D.

Q.F. Stamber Revilla Pulcha

Bach. Janeth Medina Perez

Bach. Juliza Paredes Fuentes

Vacantes: 20 participantes

Fecha: 30 y 31 de mayo y 01 de Junio  (4 horas diarias)  

Horas académicas: 12hrs

COSTO

Estudiantes: 80 soles

Egresados y profesionales: 120

Laboratorio: H-202 y H-203

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PURIFICACIÓN Y CARACTERIZACIÓN BIOQUIMÍCA Y FARMALÓGICA DE TOXINAS PROCEDENTES DE VENENO DE SERPIENTES

OBJETIVOS

• Mostrar a la cromatografía liquida convencional y de alta eficiencia  así como sus  variantes o tipos, como método para la separación de los componentes del veneno de serpientes como instrumento valioso en la discriminación de los componentes presentes en los venenos.
• Conocer los diversos procedimientos en los análisis físico-químicos  en la caracterización de las biomoléculas presentes en los venenos de serpientes.
• Mostrar las diversas caracterizaciones de farmacología experimental para el análisis de cada uno de los componentes presentes en los veneno de serpientes.
• Incentivar la investigación básica en el área toxicológica como elemento fundamental para una ciencia aplicada en el desarrollo biotecnológico.

SUMILLA DE CONTENIDOS.

TEÓRICO

Métodos de estudio de las proteínas

• Purificación de proteínas y enzimas: Fundamentos, principios y aplicaciones.
• Cromatografía liquida Tipos: Cromatografía convencional.
• Cromatografía de alta performance.  Cromatografía de exclusión molecular. Cromatografía de intercambio iónico. Cromatografía de afinidad. Cromatografía de interacción hidrofóbica. Cromatografía de fase reversa.
• Electroforesis: Fundamentos, principios y aplicaciones. Electroforesis 2D.
• Secuenciamiento de Proteínas: Fundamentos, principios y aplicaciones.
• Degradación de Edman. Sistema Procise ( Waters ). 
• Espectrometría de masa: Fundamentos, principios y aplicaciones.   

Biotecnología de proteínas como modelos biológicos.

• Toxinas de veneno de serpientes, arañas, escorpiones
• Proteínas de origen vegetal.

PRÁCTICO

• Purificación de Toxinas en sistemas   de Cromatografía liquida convencional;
• Cromatografía de exclusión Molecular
• Cromatografía de Intercambio Ionico
• Electroforesis
• Electrolisis en SDS PAGE     
• Estudios calorimétricos
• Farmacología Experimental en venenos
• Análisis de la actividad inflamatoria (Edema de pata)
• Análisis de la actividad Coagulante (Fibrinogenolitica )
• Análisis de la actividad hemorrágica ( Metaloproteasa)
• Letalidad de los venenos ofídicos (Dosis Letal media) DL50 

       

EVALUACIÓN

Los participantes expondrán trabajos publicados en el área toxinologica de relevancia internacional

RESPONSABLES

Prof. Luis Alberto Ponce Soto Ph.D.

Docente Credenciado del Departamento de Bioquímica – Instituto de Biología de la Universidad Estatal de Campinas – Brasil.

Colaboradores:

Augusto Vilca Quispe  

Doctorando del Laboratorio de Quimica de Proteinas Instituto de Biologia Universidad Estatal de Campinas

José Antonio Valeriano Zapana     

Maestrando del Laboratorio de Quimica de Proteinas Instituto de Biologia Universidad Estatal de Campinas

METAS DEL PARTICIPANTE Y TASA EDUCATIVA

Limitadas

CALENDARIO PARA EL DESARROLLO DEL EVENTO

Duración: 5 días útiles

PAGO AL PONENTE

Por establecer

INFRAESTRUCTURA.

Los requerimientos de materiales son:

FÍSICO-QUÍMICOS:

EQUIPOS

• Cámara de electroforesis de proteínas
• Columnas de cromatografía convencional
• Espectrofotómetro

REACTIVOS

• Resinas (Sephadex G-75 e intercambio ionico)
• Marcadores de masa  molecular para electroforesis SDS-page
• Marcadores de masa molecular para columna cromatográfica
• Reactivos para electroforesis de proteínas.
• Fibrinogeno bovino.
• Dimetil sulfoxido (DMSO) o acetonitrilo.

BIOLÓGICOS

EQUIPOS Y REACTIVOS

• Kit de creatinokinasa (intramuscular)
• Capilares de 80ul heparinizados
• Centrifuga de capilares
• Jeringas hipodérmicas de 300 ul de volumen  
• Guantes quirúrgicos
• Equipo de disección
• Xilol
• Pleisrtometro o medidor de inflamacion de edema de pata (RATON)
• Jaulas
• Algodon
• Alcohol

ANIMALES

• Ratones de 18 a 20 gr de peso
• Numero de ratones estará en función de los grupos a establecer

OTROS

• Software Origin para análisis de resultados.

COSTO:

Estudiantes: S/. 200.00

Profesionales: S/. 250.00 

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CULTIVO CELULAR

OBJETIVOS:

• Proporcionar a los participantes los fundamentos teóricos de cultivo celular
• Desarrollar en forma práctica las técnicas de cultivo celular
• Mostrar la aplicación de la técnica de cultivo celular en el campo de la Biotecnología

SUMILLA DE CONTENIDOS

TEORÍA

• Biología de las células en cultivo
• El ambiente de la célula en cultivo: Medio de cultivo, suplementos, elección de matriz de cultivo etc
• Tipos de cultivo celular: cultivo primario, secundario y continuo
• Procedimiento de subcultivo
• Criopreservación celular
• Descongelamiento de células
• Evaluación de citotoxicidad celular
• Ensayos para la detección de contaminación microbiana (bacterias, hongos micoplasmas)
• El cultivo de laboratorio de cultivo celular: Diseño e implementación

PRÁCTICA

• Técnica aséptica y buena práctica en el cultivo celular
• Preparación de medios de cultivo y soluciones
• Descongelamiento de células
• Subcultivo de células adherentes
• Recuento celular
• Evaluación de viabilidad celular (azul de tripan)
• Ensayo de citotoxicidad celular MTT
• Criopreservación de células

FIJACIÓN DE ORGANIZADORES Y RESPONSABLES

Docentes de la facultad de Ciencias Farmacéuticas, Bioquímicas y Biotecnológicas

Dr. Oscar Murriel Pinazo

Msc. Carlos Arenas Chavez

FIJACIÓN Y CALIFICACIÓN DE PONENTES O DISERTANTES

Docente de la Universidad Católica de Santa María

Msc. Carlos Arenas Chavez

META DE PARTICIPANTES Y TASA EDUCATIVA

Promoción para estudiantes 

2 grupos de 15 vacantes cada una a 200 soles cada participante (Valor real 250)
COSTO
Estudiantes: 250
profesionales: 300

CALENDARIO PARA EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD

Del 30 de Mayo al 03 de junio de la 17 horas a 20 horas

INFRAESTRUCTURA Y SERVICIOS REQUERIDOS

Laboratorio H - 401

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DISEÑO DE PRIMERS

OBJETIVO:

• Entender los diferentes algoritmos para el diseño de Primers en Bioinformática
• Aplicar los diferentes algoritmos a sistemas problema
• Manejar Software que tienen implementados los diferentes algoritmos

PROGRAMA

• Métodos Bayesianos y algoritmos asociados
• Primer3
• UniPro
• Manejo de Chimera

AMBIENTE: H-401

COSTO: 80 soles

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SEGUNDO CURSO TEÓRICO PRÁCTICO DE ELABORACIÓN DE CERVEZA ARTESANAL

OBJETIVOS:

• Que el participante adquiera los conocimientos básicos necesarios para iniciarse en el arte de elaboración de cerveza y pueda elaborar su propia cerveza en casa.
• Los asistentes elaboraran ellos mismos un lote de cerveza (rubia ó negra) la cual se degustara al termino del curso.
• El objetivo final del curso es conseguir que el participante tenga una idea global del proceso biotecnológico implicado en la elaboración de cerveza

SUMILLA DE CONTENIDOS.

Ley de pureza Alemana “REINHEITSGEBOT”

Materias Primas.

• Malta
• Agua
• Lúpulo
• Levadura

Proceso de elaboración

• Introducción
• Cocimiento
• Fermentación, envasado, Carbonatación y maduración
• Degustación

RESPONSABLE.

Ing.  Biotecnologo  Willy Valdivia Carpio.

META DE PARTICIPANTES

Dos grupos de 20 participantes cada uno

CALENDARIO PARA EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD

Teoría       (Ambos grupos)   Lugar  UCSM.

Miércoles 02 de Junio del 2011  de 18.00 a 20.00 horas   SUM C-402

Practica  (primer grupo)  Lugar.-    Parque industrial

Jueves 02 de junio de 11.00 a 18.00 horas    (Incluye refrigerio)

Viernes 03 de junio de 10.00  a 11.00 horas

Práctica  (segundo grupo)  Lugar.-      Parque industrial

Viernes 03 de junio de 10.00 a 18.00 horas   (Incluye refrigerio)

Clausura del Curso          Lugar.-      Parque industrial

Viernes 15 de Julio de 12.00 a 14.00 horas

INFRAESTRUCTURA Y SERVICIOS REQUERIDOS.

UCSM  “SUM-402”

Parque Industrial             “Cayetano Arenas Nº………”


COSTO: 100 soles

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CURSO TEÓRICO – PRÁCTICO: PCR EN TIEMPO REAL (qPCR) PRINCIPIOS Y APLICACIONES

OBJETIVOS:

• Proporcionar a los participantes los fundamentos teóricos de PCR en tiempo real (qPCR)
• Desarrollar en forma práctica un experimento de qPCR
• Enseñar el análisis e interpretación de los resultados del PCR en tiempo real
• Brindar una visión de las aplicaciones de esta técnica en el campo de la Biotecnología

SUMILLA DE CONTENIDOS

TEORÍA

• Fundamentos básicos de PCR
• Conceptos teóricos de PCR en tiempo real o cuantitativa (qPCR)
• Comparación de PCR de tiempo final y de tiempo real
• Química para la detección fluorescente en PCR en tiempo real
• Diseño de primers y pruebas
• Diseño del experimento y del ensayo de qPCR
• Aplicaciones en la Biotecnología

PRÁCTICA

• Preparación de la muestra (DNA o RNA)
• Control de calidad del DNA o RNA
• Optimización de las condiciones de ciclaje de los primers
• Estandarización de la reacción de qPCR
• Estrategias de Cuantificación en qPCR: Cuantificación absoluta y relativa
• Análisis e interpretación de datos

FIJACIÓN DE ORGANIZADORES Y RESPONSABLES

Docentes de la facultad de Ciencias Farmacéuticas, Bioquímicas y Biotecnológicas

Dr. Oscar Murriel Pinazo

Msc. Carlos Arenas Chavez

FIJACIÓN Y CALIFICACIÓN DE PONENTES O DISERTANTES

Docente de la Universidad Católica de Santa María

Msc. Carlos Arenas Chavez

META DE PARTICIPANTES Y TASA EDUCATIVA

2 grupos de 15 vacantes cada una a 400 soles profesionales y egresados, 300 soles estudiantes, vacantes limitadas

CALENDARIO PARA EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD

Del 30 de Mayo al 03 de Junio de las 17 horas a 20horas

INFRAESTRUCTURA

Laboratorio H-401

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TRANSFERENCIA Y CRIONCONSERVACION DE EMBRIONES

A 

B.      OBJETIVOS

·         Aplicar Los avances cualitativos en Reproducción y Mejora Genética de especies productivas, aplica técnicas de punta como el Transplante y la Congelación de Embriones, con el propósito de garantizar un  un aprendizaje real y satisfactorio

·         Capacitar en forma teórica y práctica a  Profesionales vinculados a la Producción   Animal, así como a estudiantes universitarios avanzados y Empresarios Pecuarios.   

C.      SUMILLA DE CONTENIDOS

·         Importancia de la Transferencia de embriones, aplicaciones y perspectiva

·         Ventajas de la Transferencia de Embriones

·          Selección de hembras Donantes de embriones,  

·          Tratamiento para   superovulación de las Donadoras

·         Sincronización de celo

·          Aspiración y Colección de embriones

·         Morfología embrionaria

·         Manipulación de embriones

·         Técnicas de Implante  y transferencia de embriones

·          Diagnóstico precoz de gestación  a las receptoras por ultrasonografía

              CRIOPRESERVACIÓN DE EMBRIONES  

·          Concepto de Criopreservación y Teoría

·          Soluciones para congelar embriones, materiales y equipos necesario

·          Diferentes Métodos de Criopreservación

·          Método Convencional

·          Congelación y Descongelación

·          Manipulación embrionaria  

• Ecografía y Reconocimiento de estructuras,
• Seguimiento fetal
• Sexaje fetal
• Seguimiento de Donadoras y Receptoras
• Diagnostico temprano de gestación por ultrasonografía

                      Equipamiento

D.      FILIACION DE ORGANIZADORES Y RESPONSABLES

Docentes del Programa Académico de Ingeniería Biotecnológica

Dr Oscar Murriel

Dra. Milagro Terán Dianderas

E.       FILIACION Y  CALIFICACION DE PONENTES O DISERTANTES

Docentew Universidad Nacional del Altiplano Puno

Dr. Guido Perez  Durand

F.       META DE PARTICIPANTES Y  TASA EDUCATIVA

Estudiantes cada uno S/. 100.00 nuevos soles

Profesionales                       150.00 Nuevos soles

Total de participantes : 20

G.     CALENDARIO PARA  EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD

03 DE Junio de 17 a 20:30 horas  (Teoría)

04 de Junio 8:00  a 13:00 horas (práctica en el campo)

H.     INFRAESTRUCTURA Y SERVICIOS REQUERIDOS

Teoria : Auditorium

Práctica: campo

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DETERMINACIÓN DE METABOLITOS SECUNDARIOS POR ESPECTROFOTOMETRÍA EN CULTIVOS DE AGROEXPORTACIÓN

OBJETIVOS:

1.1. Comprender los fundamentos básicos en la determinación de metabolitos secundarios por espectrofotometría.

1.2. Explicar el método de determinación de metabolitos secundarios por espectrofotometría en cultivos de exportación.

1.3. Explicar la importancia de la determinación de metabolitos secundarios en cultivos de agroexportación.

1.4. Renovar y fomentar el interés por el cultivo de productos de importancia económica.

SUMILLA DE CONTENIDOS:

1.5. Análisis de la pungencia de Allium cepa (cebolla)

1.6. Cuantificación de carotenoides totales.

1.7. Determinación de capsaicina y capsantina en la oleorresina de Capsicum annuum (paprika)

En cada práctica se incluirá los siguientes aspectos: Introducción, Fundamento teórico, procedimiento experimental, análisis de resultados y conclusiones.

FILIACIÓN DE ORGANIZACIÓN Y RESPONSABLES: Ing. Cinthia Córdova Barrios.

DURACIÓN: del 30 de mayo al 1 de junio

HORARIO: De 8:00 a 11:00 hrs.

LUGAR: H-104

VACANTES: 20

COSTO: S/. 100.00

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